1. DAPI染色實驗簡介：
當使用DAPI與雙鏈DNA結合染色時，熒光強度可以提高約20倍。如果與單鏈DNA結合，則不會增強熒光。 DAPI的化學名稱為4,6-二mid基-2-苯基吲哚（4,6-二mid基-2-苯基吲哚）。 DAPI可以結合雙鏈DNA插槽，尤其是AT堿基，并且還可以在DNA序列中插入少于3個連續的AT堿基對。當它與雙鏈DNA結合時，熒光強度可以增加約20倍。如果與單鏈DNA結合使用，熒光不會增加。因此，DAPI染色法是一種簡單，快速，靈敏的DNA檢測方法。實驗方法。盡管DAPI的熒光強度低于Hoechst，但其熒光穩定性優于Hoechst。其特異性高于溴化乙錠和碘化丙啶。

2. DAPI染色實驗所需的材料：
（1）0.01mol / L PBS（pH7.0）：取34ml 0.1mol / L NaH2PO4？H2O，66ml 0.1mol / L Na2HPO4、0.9g NaCl溶解于900ml二次蒸餾水； （2）DAPI儲存溶液：將0.5mg DAPI溶于5ml PBS中，分裝，并在低溫下長時間保存； （3）DAPI工作液：用PBS稀釋DAPI儲存液至終濃度為0.1ug / ml。

3. DAPI染色實驗操作步驟：
（1）將培養的單層細胞（未固定）或新鮮組織等冷凍切片，用PBS沖洗5分鐘； （2）DAPI工作溶液在室溫下染色5-20分鐘（根據實驗材料而定）（取決于染色結果）； （3）PBS沖洗； （4）水溶性貼片，游離細胞也可以直接用含DAPI的PBS貼片； （5）熒光顯微鏡觀察。